凝血樣本為什麼不能放置太長時間

Ⅰ 如何應對臨床血樣的溶血問題

[返回]前言近十年隨著實驗室診斷技術和方法的發展，目前的臨床實驗室檢測不僅包括病理學診斷，還包括對疾病風險（預防）和治療過程（治療）的監測。基因組學、葯物基因組學、蛋白組學和治療診斷學使得實驗室檢測成為復雜的綜合過程。但是，以上這些進步還不能避免實驗室檢測中一直存在的問題，即產生檢測錯誤以致診斷推理過程受到影響或者出現錯誤，進一步增加診治費用和危害患者健康。通常的醫療事故由不恰當的或者延遲的臨床干預引起，導致事故的醫療環節主要是診斷的錯誤或者延遲，占醫療事故的26%至78%。根據Lundberg大腦-大腦迴路理論，所有的檢測過程開始於醫生的大腦中臨床假設的模式，繼而是最恰當的檢測方法的選擇，然後是患者的准備、生物學樣本的採集、處理（樣本分析前過程）、樣本分析（分析過程），最後將結果報告給醫生（分析後過程）。在這一復雜的檢測過程中，患者檢測結果的正確性依賴於樣本分析前過程中各個步驟和分析過程的有效性。樣本分析前過程中患者個體原因或者整個程序設計的缺陷（畢竟這是一個勞動密集型程序）可以導致錯誤的發生。樣本分析前問題約占醫療錯誤的70%，最常見的分析前問題歸納為：樣本採集失效，包括樣本質量問題（溶血、凝血、污染），樣本容量不足，採集容器錯誤和樣本識別錯誤，其中溶血樣本是所有問題中最為常見的，約佔40%-70%之多。由於溶血導致臨床實驗室大量檢測結果無效，因此歐洲樣本分析前科學委員會意識到應該對其給予足夠的重視。樣本溶血的原因和本質臨床溶血的定義為游離血紅蛋白的濃度高於0.3g/L（18.8μmol/L），使血漿或者血清樣本出現肉眼可見的粉色至紅色外觀，即溶血紅細胞至少為0.5%。發生溶血的原因多與樣本採集或者處理有關（圖1）。如血液抽取過程中沾染皮膚上過多的酒精，通過刻度很小的針頭，靜脈不易取血或者不易找到，靜脈過脆或者過細，取血管路局部阻塞或者注射器負壓過高，取血管預充EDTA，過度搖晃或者攪拌樣本，樣本置於高溫或者低溫環境，高速長時間離心或者樣本分離前放置時間過久，樣本分離容器不完整或者凝膠分離試管重復離心。此外，多種原因也可發生體內溶血，如自身免疫性貧血和其他原因的血紅蛋白變異、葯物反應、重度感染、血管內播散性凝血、輸液反應、心臟瓣膜和HELLP（溶血、肝酶升高和血小板減少）綜合症。圖1 臨床樣本溶血的常見原因實驗室檢測過程發生溶血的後果由於溶血通常是在分離血清或者血漿之後才被察覺，因此是一個很難處理的問題，並且會對多種生化反應造成干擾。游離血紅蛋白的增多通過升高選擇性吸光度或者空白對照值而干擾濃度依賴的分光光度測定方法的結果，尤其是測定與415、540和570 nm接近的吸光度時。除了血紅蛋白，紅細胞中的多種結構蛋白、酶類、碳水化合物也可以也分析試劑相互作用或者競爭。溶血可以使以下測定指標的結果呈線性增長：谷丙轉氨酶、穀草轉氨酶、肌酐、肌酸激酶、鐵離子、乳酸脫氫酶、脂酶、鎂、磷、鉀和尿素；可使以下測定指標數值下降：白蛋白、鹼性磷酸酶、膽紅素、氯化物、γ-葡萄糖甲基轉移酶、葡萄糖和鈉。紅細胞中的多種酶類的釋放、損壞或者其他物質都可以通過與抗體或者化合物發生交叉反應而對免疫測定結果造成影響。目前為止溶血能夠干擾的特異性檢測包括：降低肌鈣蛋白T的水平，升高肌鈣蛋白I和前列腺特異性抗原的水平，使VB12、睾酮和皮質醇檢測可以出現假陰性結果，使胰島素、胰高血糖素、降鈣素、甲狀旁腺激素、促腎上腺皮質激素和胃泌素降解而無法測定。此外，紅細胞中葉酸鹽的含量是血清中的30倍，發生溶血的樣本無法正確檢測。有報道溶血可使熒光偏振免疫測定法和結合珠蛋白檢測出現假陰性結果。溶血的存在還會顯著影響幾種凝血試驗，由於紅細胞內凝血激酶的釋放，使凝血酶原時間延長0.5%、纖維蛋白溶酶片段（D二聚體）濃度增加2.7%，活化部分凝血激酶時間顯著縮短，抗凝血酶濃度顯著下降。怎樣預防溶血樣本實驗室檢測的假性結果由於存在多種人為因素影響血液樣本的質量，因此主要的預防措施就是建立樣本採集和送檢樣本評估的指導原則或者建議（圖2）。在實驗室人員教程和測試內容中加入關於溶血造成檢測指標干擾的詳細知識，並對抽血人員進行適宜的培訓也是減少實驗室錯誤的主要措施。主要的教程內容應包括：使用常規管徑針頭和真空取血管，對帶有導管的重症患者或者靜脈細弱的患者謹慎取血，避免從血腫部位取血和延長止血帶作用時間，不要大力攪動樣本並在合適的溫度和濕度條件下取血，此外，還應掌握標準的運輸、保存、離心、分離上清的條件和方法。第二個重要措施是明確樣本溶血的存在並明確其溶血程度對檢測結果的影響。現代實驗室技術允許我們應用分析前模型和測定儀以及自動分析軟體對較寬范圍的分析干擾進行校對。建議對肉眼無法覺察的但會對檢測結果造成影響的溶血樣本（血清血紅蛋白＜0.6g/L，ALT、LDH、鉀和鈉檢測）測定前應用這種校準技術。與此不同的是溶血可以造成分析方法受到干擾的情況，這種情況下儀器/試劑生產商應該提供溶血對每一種檢測所造成干擾的資料。但是，如果說明書信息模糊，建議操作人員在實驗室進行驗證試驗。通過對比來自於個體間和個體內的參考文獻的結果和非溶血樣本的結果確定某一測定方法可以接受的整體允許誤差和分析質量標准。一旦確定了溶血樣本，可採取以下三種措施：①溶血樣本的數據校準；②針對某些適應證報告檢測結果溶血中可能造成的干擾（描述性說明）；③使醫生提高警惕並重新採集樣本。結論溶血一直是各地臨床實驗室非常關注的問題，它是引起分析前差異性的主要原因，可以導致多種檢測指標的假性結果。很多情況下提高樣本的採集和處理可以避免溶血的發生，收集地區醫療保健機構的溶血相關數據可以為檢測溶血樣本的校準和評估提供信息學資源。相信在各地臨床機構、實驗人員和醫生謹慎操作、全面分析和廣泛討論的氣氛中，溶血發生率和影響患者診治的錯誤檢測結果出現率都會明顯下降。

Ⅱ 激活凝血時間的原理

凝血時間測定原理
新鮮血液離體後，因子被異物表面（玻璃）激活，啟動了內源性凝血。由於血液中含有內源性凝血所需的全部凝血因子、血小板及鈣離子，血液則發生凝固。血液凝固所需時間即為凝血時間（clotting rime，CT）。

毛細血管采血法：可用玻片法或毛細血管法測定。由於采血過程易混入較多組織液因而即使有內源性凝血因子缺乏，也仍發生外源性凝血，使本該異常的結果變為正常。本法極不敏感，僅能檢測出Ⅷ：C水平<2%的血友病患者，漏檢率達95%故屬於淘汰的方法。

靜脈采血法：由於血液中較少的混入組織液，因此對內源凝血因子缺乏的第三性比毛細血管采血法要高。目前有3種檢測法：
（1）普通試管法（Lee-White法）：僅能Ⅷ：C水平<2%的患者，本法不敏感目前也趨於淘汰。
（2）硅管法（SCT）：本法與普通試管法的測定方法基本相同，唯一的區別是採用塗有硅油的試管。由於硅管內壁不易使內壁凝血因子接觸活化，故凝血時間比普通試管法長，也較第三可檢出因子Ⅷ：C水平<45%患者。
（3）活化凝血時間（activatedclotting rime，ACT）法：本法是在待檢全血中加入白陶土部分凝血活酶懸液，先充分激活接觸活化系統的凝血因子Ⅶ、Ⅺ等，並為凝血反應提供豐富的催化表面，從而提高了試驗的第三性，是內源性系統第三的篩選試驗之一，能檢出Ⅷ：C水平<45%亞臨床血友病。ACT法也是監護體外循環肝素用量的較好的指標之一。
以上測定凝血時間的各種方法，在檢測內源性凝血因子缺乏方面，無論敏感性或准確性均不如活化部分凝血活酶時間測定（APPT）。

Ⅲ 出凝血時間的注意事項

PT,APTT凝血實驗檢查均使用靜脈血.采血人員應技術熟練,以防止組織損傷,外源性凝血因子進入針管. 2.凝血實驗標本最好不與其他實驗一起採集,否則由於標本的分配,分裝等使用血液停留在針管的時間延長.一般血液採集,進入 容器至進行實驗所用的時間越短,所分析的凝血因子被保護得越好.從輸液三通管取出血的做法不可取.
3.取血時病人應鬆弛,環境溫暖,防止靜脈攣縮,止血帶的壓力要盡可能小,壓力大及束縛時間長可影響局部血液的濃縮和內皮細 胞釋放組織纖溶酶原活物(t-PA),後者將引起纖溶性增強,血小板短和內徑應標准化,國際上推薦用21G1.5或20G1.5 針頭.取血時,拉針栓的速度要慢而均勻,使血液平穩地進入注射器,防止氣泡的產生.
4.一旦取樣完畢,立即與抗凝劑充分混合,一般提倡使用真空采血管.此管有充分的透明度,根據取血量設計,有2.0,5.0 ,10ml各種血液收集管,真空負壓並有定量的抗凝劑,能保證抗凝劑與取血量的比例,且能有充分的空間便於血液和抗凝劑混合.
5.用硅化玻璃或塑料注射器采血.考慮結果的精確性,應將試管刻度的可能誤差控制在既定體積的10%以內.
6. 采血後標本在低溫保存且在一定時間范圍內.筆者曾對不同條件保存的血漿因子變化進行了探討,結果顯示在32℃保存血漿6,12, 24hⅧ因子活性可分別消失50%,60%95%,即使保存在4℃也分別消失5%,55%,70%.V因子活性在32℃分別消失 25,40,80%,而在4℃則僅損失0%,5%,10%.因此測定APTT的血漿在-80℃至少可保存1個月,4℃為6h,2 0℃為6h,而32℃僅為血漿,在4℃為24h,20℃為6h,32℃為2h.
7.國際血液學標准化委員會(ICSH),國際血栓與止血委員會(ICTH)推薦使用3.2g/dl(含2H2O)或0.109mo l/L的枸櫞鈉作為凝血因子檢查的抗凝劑.另外,近年來,許多試驗室採用緩沖抗凝劑,這種試劑對標本經冷凍保存後再行分析更為適 宜.因為無緩沖劑,血漿pH值隨時間而增加,凝固時間可延長,特別是Ⅷ因子即使是在-20℃保存,其凝血活性也可減少50%.緩 沖劑的作用是維持血漿恆定pH,防止易變因子失活.抗凝劑在血標本的絕對含量可改變血漿中鈣離子濃度,進而影響試驗結果,一定要 注意采血時血液與抗凝劑的比例.應指出,所謂血液與抗凝劑按9:1比例混合,實際上是指抗凝劑與正常壓積血液之間的比例而言.因 此應根據患者紅細胞比例(Hct)狀況隨時調整抗凝劑用量. 1. 凝血活酶應注意的問題:
(1)組織凝血活酶標准化應用的國際參考品(international reference preparation, IRP),有下列幾種:單一組織凝血活酶國際參考品:是一種組織提取物的生理鹽水懸液制劑.WHO在英國使用的統一標準的英國 比較凝血活酶,編號67/40.同時又以BCT67/40為基礎標准化了次級參考品.如牛腦組織凝血活酶,編號68/434; 兔腦為70/178等.復合組織凝血活酶國際參考品:它是組織提取物的生理鹽水懸液中加入適量纖維蛋白原,因子V和氯化鈣組成的 制劑,如牛組織凝血活酶OBT/79等.
(2)組織凝血活酶工作制劑的國際敏感指數(ISI),由於不同組織凝血活酶對凝血因子 的敏感性不同.為了使不同敏感性的組織凝血活酶在檢測PT中能得到同樣的結果,必須要制定一個共同的敏感性指標.自製的試劑要與 國際參考品(IRP)進行比較,然後得出一個校正值(即ISI).ISI值越接近於1.0,表明組織凝血活酶試劑越敏感,因此, 生產和出售得產品必須標有ISI.
(3)儀器特有的ISI:上述PT根據報告方式適用於手工法(試管傾斜法)測定PT.但是手工 法與儀器法以及儀器法與儀器法測定PT的國際標准化比值(INR)之間,仍有差異.為此,專家們提出建議:同一組織凝血活酶試劑 用於不同儀器時,可用所謂的儀器特有的ISI或稱區域性ISI來計算INR.每台儀器所用的凝血活酶試劑都應該有特定的IS I值,重新標定ISI值的做法是購買標有INR的凍干血漿,然後在自己的儀器上再標定所使用凝血活酶試劑的ISI值,這樣才可使 病人的INR具有可比性.
(4)某些凝血活酶和部分活化凝血活酶並不一定與某此儀器相匹配.渾濁的或含微粒的凝血活酶和部分活化 凝血活酶不能運用通過光學系統測定終點的儀器進行檢測.
(5)凝血活酶和部分活化凝血活酶的使用步驟必須嚴格按照說明書進行.通 常在使用前必須充分混勻試劑,以使微粒重新均勻懸浮於液體中.按說明書要求的溫度存放試劑,並且試驗過程中,將試劑置於37℃下 的時間不能長於說明書中規定的溫度.
(6)做APTT實驗時所用的活化劑不同,對血內肝素,狼瘡抗凝物質及因子Ⅷ,Ⅸ缺乏症的敏 感性也不同,要根據檢測項目來選擇不同活化劑的APTT試劑.同樣PT延長時反遇有關凝血因子中單一因子或幾個因子缺陷引起的病 理現象,由於不同疾病可能僅反映某一因子的變化,因此一種特定試劑不可能對這些疾病的變化的敏感性一致.由於不同廠家生產的PT 試劑質量不同,因此,同一份標本用不同PT試劑其結果可有明顯的差異.因此PT實驗最好採用INR的報告方式.
2. 試劑准備過程中應該使用去離子水.如果pH值增高的水沒有得到適當的緩沖,將會延長測定結果.如果用含氨的水配製抗凝劑,會導致 V因子活性快速降低,從而延長凝血酶原時間.凝血活酶,部分活化凝血活酶,緩沖液和抗凝劑須在4-10℃條件下貯存,但在室溫下 保存氯化鈣和水.
3. 正常對照血漿通常將多份健康人血標本混在一起,以彌補個體誤差.正常對照血漿要求20份以上健康,年齡在18-55歲間的男女個 體,且刪除服葯者,須在平靜,休息狀態抽血.樣本離心取出血漿後混勻,分裝小瓶,凍存於-80℃備用,或冷凍乾燥.
4.參比血漿:標准化是質控的重要組成部分,方法標准化對有的實驗室來說是困難的,因有設備條件方面的限制.為了使結果大同一實驗室 的不同時期具有可比性,必須使用標准品或參比血漿.WHO已建立了10多種國際標准品. 1.玻璃器皿的要求:貯存和測試時應選用干凈,沒有劃痕的試管.酸清洗法(鹽酸3mol/L)被公認為適用於凝血研究清洗玻璃製品的 最佳方法.玻璃製品必須通過徹底沖洗,以去除殘留的酸,避免改變容器表面的pH值.一次性玻璃和塑料製品分開保存.手工法PT或 試管法全血凝固時間測定時,試管口徑為8mm,直徑越大,CT越長.
2.溫度的要求:人工測定終點法要求水浴箱的溫度必須保持在(37±1)℃,並且周圍照明設備要好,便於讀取終點.如果為了讀數而將 試管從水浴箱中拿出,傾斜觀察,此時動作應迅速,否則試管中的血漿溫度將很快下降.
3.儀器的選擇:自動終點測定法有半自動和全自動兩種類型,區別在於前者在試劑和血漿移液步驟上仍是手工的;而後者完全由儀器自動操 作.自動終點法測定所得結果重復性好,大大提高了不同試驗室結果間的可比性.
應該根據儀器的精密度,可靠性,使用和維修的簡易程度來選擇所購買儀器.現在已有不少用合成底物法代替以凝固為終點的生物學測定 法的報道.但是,這兩種測定方法的臨床意義不盡相同. 1. 許多試驗誤差都來源於技術的錯誤.在實驗技術,試劑,溫度及pH值上很微小的變化都會導致試驗結果明顯的變化.孵育時間與溫度是 在一期法凝血酶原時間測定時應嚴格控制的參數.血漿不能在37℃下放置超過10min,凝血活酶放置時間也不能超過說明規定的時 限.
2.手工法PT或試管法CT檢查時,傾斜試管動作一定要輕,角度要小,以減少血液與管壁的接觸面積.同一標本要做二管(有文獻報告試 管法CT檢查要3管)並取均值報告.每批實驗必須有正常對照.
3.血液凝固主要是酶催化的反應,所以實驗過程中要嚴格控制理想的pH環境和溶液的離子強度.多數常規試驗都在處於血液生理pH值緩 沖范圍的緩沖系統中進行.反應混合物的pH值必須處於7.2-7.4之間.
4.試驗結果准確還取決於所用的反應物的量,加入順序和不同反應物的孵育時間.如每次APTT試驗時,活化部分凝血活酶試劑和血漿混 合物的孵育時間必須一致. 混勻過程決定了APTT試驗中接觸活化的量,在孵育時如果在活化部分凝血活酶與血漿混合的技術不佳,將會改變測定結果。
5. APTT,PT需乏血小板血漿.一般3000r/min離心10min後分離血漿.離心前注意標本量,離心後注意血漿的量(Hc t)以保證抗凝劑與標本量最適比例.
6. 試驗前檢查血漿是否有溶血,黃疸,脂血和出現凝塊.紅細胞膜含有磷脂,溶血標本具有與血小板第Ⅲ因子(磷脂)相似的凝血活性,這 種磷脂能縮短溶血血漿的APTT值.標本中如果出現凝塊,無論凝塊多麼小,均會影響試驗結果.
7.報告方式:(1)以PT的秒(s)數報告.(2)以患者PT(s)/正常對照(s)的比(PTR)報告.(3)在口服葯物治療監 控時以INR報告.(4)ICSH規定,不再用百分比(活動度)報告.(5)APTT以秒報告。 繪制質控圖並隨時分析其變化趨勢是質量控制的重要手段.在每天工作中,同時測正常和氨基常對照血漿(商品或自製),並用Le vey-Jeuny質控圖檢查有無失控.其步驟為,首先在常規的實驗條件下(包括高素質的實驗人員,規范的操作,穩定的儀器), 對質控品至少進行10次測量,計算出X及標准差,然後繪出質控圖,質控物的X值為基線,縱軸有X±2s.每次試驗時質控物與標本 一起檢測,並把當日的結果點在圖表上.下列的質量變化圖形有利於操作人員判斷結果是否有所失控.當失控時,按下述步驟(圖1)檢 查原因.
室間質評:各實驗室必須積極參加由檢驗中心組織的室間質評活動,以便了解本單位的結果准確性,因儀器和試劑不同,同一份質控 血漿可行到不同結果,應將回報結果根據儀器試劑分組比較.

Ⅳ 生物:斐林試劑為什麼要現配先用且不能放置太久

現混現用主要是要新制的Cu(OH)2，Cu（OH）2很容易沉澱析出，久制的氫氧化銅完全沉澱，反應會很慢甚至發生不了。

斐林試劑，它是由氫氧化鈉的含量為0。1g/mL的溶液和硫酸銅的含量為0。05g/mL的溶液，還有專含量為0。2g/mL酒石酸鉀鈉配製而成的屬，其本質是新配製的氫氧化銅。

斐林試劑A液和斐林試劑B液反應生成斐林試劑。檢測還原糖時，A液和B液必須反應完全後再加入待測樣本里，而且必須是現用現配。

因為硫酸銅和氫氧化鈉放在一起會產生氫氧化銅沉澱，所以現配置的斐林試劑才能不使兩者反應完全，時間長了都變成沉澱就沒效果了。

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斐林試劑是公元1849年由德國化學家赫爾曼·馮·斐林製作出來，可以用來區分水溶性的醛及酮官能基，也可以用來測定單糖。

斐林試劑可以用於鑒定含有羰基的化合物是否為醛或酮。試劑中的二價雙酒石酸鹽負離子螯合物為氧化劑和此檢測中的活化劑。若化合物中具有醛基，則會被氧化呈陽性反應，此外除具有α-羥基酮官能基的化合物，其他酮類皆不與斐林試劑反應。

該反應原理是二價雙酒石酸鹽負離子會去氧化羧酸陽離子，在這個過程中螯合物的中央二價銅離子被還原成為一價銅離子（即發生了氧化還原反應），形成磚紅色的氧化亞銅沉澱，此即斐林試劑的陽性反應結果。反之，沒有發生沉澱則為陰性結果。

Ⅳ 標本放置過久會對生化的哪些檢驗項目產生影響有什麼影響

需要看是什麼標本，血離子標本放置過久會使鉀離子升，分離膠管貯存的血標本再離心致鉀離子增高。嚴密控制標本誤差因素。

標本處理方法可以採取整個個體（甚至多個個體，如細菌、藻類等微生物，或像真菌等個體小且聚生一處者），或是一部份成為樣品，經過如物理風干、真空、化學防腐處理等處理可製成。

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在製作標本前，必須先將昆蟲的內臟取出，便於針插後能迅速乾燥。但像蜻蜓中的豆娘那樣身體極細的昆蟲，則可不必去除內臟。

解剖時，可用鑷子直接從蟲的頸部和前胸背連接膜處插入，取出各個臟器。或在腹部側面沿背板和腹板的連接膜處剪開一個口子，然後用鑷子取出臟器。

接著用脫脂棉捏成一長條狀的棉花栓，用鑷子將其慢慢的塞入已掏空的昆蟲腹腔內，保持蟲體原來的體形。

Ⅵ 血常規檢查 樣本凝血 為什麼

最多見的是沒有與抗凝劑充分混勻，有時候與病人的血液有關

Ⅶ 凝血因子常溫下放置多久不能用

理論上2－8度保存2年，常溫下縮短為3個月。也不是絕對不能用，是降低到標定值的80%以下了。個人可以用，但醫院就不敢用了。

Ⅷ 酒駕血液樣本存放時間

保存期限是48小時。血液樣本如果放置超過兩天，血液中的酒精就會因為而揮發就會降低酒精的濃度，那麼排查出來的結果就不會特別准確，因此，在48小時內應當有化驗結果，如果沒有出化驗結果，應當重新抽取酒駕人員的血液。
取樣：因醉駕抽取的血樣一般取兩份，一份送檢，一份備案，備案血樣主要在需要時作DNA鑒定和酒精含量的再鑒定。
血樣保存：酒駕血液樣本存放在低溫環境中，血袋需排除空氣，並加防腐劑。
保存時間：送檢的血樣鑒定報告出來後，公安機關需作出鑒定結論送當事人確認並簽字，拒絕簽字的應註明情況。鑒定結論是給醉駕者定罪的最重要的依據，所以公安機關在血樣送檢到送達鑒定結論的過程中，都需要遵循嚴格的程序。遵循嚴格程序因而不能形成證據鏈條的不能定罪，所以在醉駕者一審服罪或二審裁定前不能將備案的血樣銷毀。

Ⅸ 細胞可不可以固定後放置一段時間再做免疫熒光

這個沒有絕對的.取決於你的試驗方法和目的.一般來說,固定後,把樣本再轉移到保存液中,可以大大延長保存的時間.
為了保護抗原表位,建議你使用新鮮配置的多聚甲醛來固定.固定後立刻轉移到5%BSA的PBS溶液中（最好放防腐劑）,可以在4度保存一段時間.
當然,樣本長時間保存,肯定對結果會有不好影響.至於影響的大小,你要做一個時間曲線來證明.以後就心中有數了.

Ⅹ 鹿茸血為什麼不能久放能放多久

鹿茸不宜長時間放在冰箱里,葯材放入冰箱內，和其他食物混放時間一長，不但各種細菌容易侵入葯材內，而且容易受潮，破壞了葯材的葯性，所以對一些貴重的葯材，如人參、鹿茸、天麻、黨參等，若需長期保存，可放在一個干凈的玻璃瓶內，然後投入適量用文火炒至暗黃的糯米，待晾涼後放入，將瓶蓋封嚴，擱置在陰涼通風處。 鹿茸的保存要特別小心，首要的是要注意空氣濕度問題，如果空氣太潮濕，鹿茸就容易發霉，接著就會生蟲。所以首先要把鹿茸放在一個通風的地方，然後用布包一些花椒，放在鹿茸旁邊，這樣就不會招蟲了。如果保存得當，三五年內，鹿茸的葯效是不會發生變化的。